ASPİRE EDİLMİŞ KEMİK İLİĞİ
Bazen, sadece kemik iliği kesitlerinin araştırılması (incelenmesi) myelofibrosis, aplastik anemi veya sekonder karsinoma gibi hastalıkların teşhisini doğrulayacaktır. Aspire edilmiş örnek¬ler fiksatife aktarılana kadar sıvı olarak muhafaza edilmeli ve son¬ra aşağıdaki gibi işleme konulmalıdır.
Teknik
1-2 cc’lik ilik bilinen yolla hızlı aspirasyonla alınır ve direkt olarak temiz bir lama alınarak ezilerek yayılır. Geriye kalan kemik iliği 6 damla Wintrobe’in oksalat karışımını içeren (sequestrene ve heparin bu amaç için daha az güvenlidir) saat camına konur. İlik partikülleri Pastör pipeti ile yaklaşık olarak 3 cc asetik asit-formalin içeren küçük bir şişeye aktarılır.
Asetik asit-formalin;
Formalin 10 cc
Glasial asetik asit 5 cc
Distile su 35 cc
Örnek laboratuvara bu şişede götürülür. Fiksasyon için 2-4 saat bırakılmalıdır. Laboratuvarda küçük şişenin tüm içeriği 10 cc % 70' lik alkol içeren bir şişeye aktarılır ve karıştırılır. İlik fragmentleri şişenin di¬bine batar ve yağ parçacıkları ise şişenin yüzeyinde yüzer. Birkaç dakika sonra, çok ince bir Pastör pipeti kullanarak tabandan ve yüzey¬den hiçbir partikül olmamasına dikkat ederek orta kısımdan alınır. Fragmanları sigara kağıdı üzerine alıp, küçük bir zarf biçiminde kat¬lanır. Zarf, bir kaset ya da biopsi sepetine yerleştirerek takibe alınır. Ototeknikonda takip yapılır. Eğer sadece bir veya iki ince fragman varsa, takip teknik tüp tekniği ile değiştirilmelidir. Tüpte takip yapılırken ince Pastör pipeti kullanılmalıdır. Her iki durumda da aşağıdaki takip önerilmektedir.
% 70' lik alkol 60 dakika
% 95' lik alkol 30 dakika
% 100' lük alkol (herbirinde 4 değişim yaparak) 30 dakika
3 değişim toluen 15-30 dakika
3 değişim erimiş parafin 30 dakika
Örnek önceden gliserol ile çalkalanmış 7.5X1.25 cm'lik tüpte taze eritilmiş parafine aktarılır. Tüp birkaç dakika partiküllerin çökme¬sini sağlamak için parafin fırınına koyulur.
Fırından tüpü çıkarıp mümkün olduğu kadar kısa sürede partiküller tübün tabanında gömülmüş olduğundan dik tutmaya gayret ederek soğutu¬lur.
Tüp dikkatli olarak kırılır.
Kırıkları atılır.
Gerekli ise trimlenir.
Mikrotom takozuna tutturulur,
Dokuzar kesitlik seri kesit alınır.
Aşağıda açıklandığı gibi boyanır.
AÇIKLAMA: Kemik iliğinde malign hücreler araştırılacağı zaman, ilik fragmanları bir plas¬tik precipitin tübüne konulur, santrifüjlenir. Süpernatan plazma atılır, fiksatif eklenerek tüp yeniden santrifüjlenir. Fiksasyondan sonra, tüp kloroform ile eritilir ve doku yukarıda açıklanan bilinen zarflama yolu ile hazırlanır.
KEMİK İLİĞİ BİYOPSİLERİ: Nötral formalin veya asetik asit-formalin fiksasyonu çoğu boyama yöntemi için tatminkar ve uygundur. Kuvvetli asitlerdeki dekalsifikasyonunun fazlalığı rutin yöntemlerle zayıf boyamaya neden olmaktadır ve Romanowski teknikleri güvenilmez ya da olanaksızdır. Parafin gömme genellikle tatminkardır.
Histoloji
-
Endosülfan ve okratoksin-A’nın birlikte sıçanlarda toksisitesi: histopatolojik değişiklikleri
-
Histoloji Pdf Ders Notları
-
DEKALSİFİYE EDİLMEMİŞ KESİTLERİN HAZIRLANIŞI
-
DEKALSİFİKASYONU TEST ETMEK
-
KELATLAMA AJANLARI
-
ELEKTROLİTİK DEKALSİFİKASYON
-
ASİT DEKALSİFİKASYON SIVILARI
-
Histopatoloji nedir ?
-
KEMİK DOKUSU VE DEKALSİFİKASYON
-
MSS’DE DEJENERE MİYELİNİN GÖSTERİMİ
-
MARKSCHE’DEN BOYASI (Spielmayer, Benda)
-
MSS‘DE MİYELİNİN GÖSTERİMİ
-
KARIŞIK OLAN TEKNİK
-
BİELSCHOWSKY TEKNİĞİ
-
GÜMÜŞ ÇÖKTÜRME YÖNTEMLERİ